壳寡糖可以促进神经损伤后的修复
周围神经损伤包括神经挤压伤、创伤或医源性损伤。外科手术多用于修复神经横断伤,而药物和物理康复相结合的保守治疗方案, 则多用于挤压损伤的神经。当周围神经缺损时,人工神经移植物是一个有效的替代自体神经的产品。当神经再生完成以后,人工神经逐渐在体内降解,并被人体完全吸收。因此理想的人工神经移植物,不但要有良好的生物相容性、
力学性能和降解性能,同时还应该具有较好的神经细胞亲合性和促进神经细胞分化、生长的作用。壳寡糖是壳聚糖的生物降解产物, 最近有报道,COS对谷氨酸诱导的海马神经元毒性具有保护作用,还能影响 PC12 细胞向神经元分化。
有研究表明壳寡糖可以促进神经元损伤后的修复功能,制备兔腓总神经夹伤模型制备,随机分为 3 组:COSs 高、低剂量组,其中 COS高、低剂量分别为 3mg/kg、1.5mg/kg。结果见下表, 再生有髓神经纤维记数结果显示,COSs 组与空白对照组相比,纤维密度显著高于对照组,随着壳寡糖剂量的增高,神经纤维密度越高。
COSs对家兔腓总神经再生有髓神经纤维密度的影响
组别 |
n |
有髓神经纤维密度(个/mm2)
|
空白对照组 |
8 |
478.01±19.79 |
COSs 低剂量组 |
8 |
820.33±37.09*# |
COSs 高剂量组 |
8 |
1 178.67±93.83* |
南通大学动物实验室将不同浓度的壳寡糖(0.1mg/ml, 0.01mg/ml) 与神经干细胞共培养 12 天, 研究壳寡糖对神经干细胞分化的影响, 对照组采用无壳寡糖培养。试验结果如下:
图1 与壳寡糖共培养12天后的神经球细胞分化照片(20×)
( 图 A:对照组; 图 B:实验组 0.01 mg/ml 壳寡糖; 图 C: 实验组 0.1 mg/ml 壳寡糖)
图2 与壳寡糖共培养 12 天后的实验组(0.01mg/ml 和0.1mg/ml 壳寡糖)
和对照组的神经球细胞分化百分率比较
由上图显示:实验组和对照组的神经干细胞分化率比较差异有统计学意义,神经球细胞分化率显著高于对照组。说明壳寡糖可以促进神经再生和生长的作用。